PlantBiotech:Species/Brachypodium distachyon - Revision history

Adm: /* 形質転換法 */

2012-08-12T02:40:05Z

‎形質転換法

Editor at 06:31, 10 August 2012

2012-08-10T06:31:08Z

Editor: /* 形質転換法 */

2012-08-10T06:28:29Z

‎形質転換法

Editor at 06:27, 10 August 2012

2012-08-10T06:27:41Z

Editor at 06:27, 10 August 2012

2012-08-10T06:27:10Z

Editor at 06:27, 10 August 2012

2012-08-10T06:27:00Z

Editor at 06:26, 10 August 2012

2012-08-10T06:26:31Z

Adm at 00:21, 8 August 2012

2012-08-08T00:21:56Z

Adm: Created page with "ここにつくってください"

2012-08-08T00:21:12Z

Created page with "ここにつくってください"

New page

ここにつくってください

@@ Line 19: / Line 19: @@
 # 3. を滅菌水で泡がなくなるまで洗う。
 # 先の細いピンセットを2本、実体顕微鏡、空のシャーレを1枚用意する。
-# 滅菌水と未熟種子を空のシャーレに入れ、実体顕微鏡で見ながら胚を取り出し、平たいほうを上にしてBDD1へ（25 ℃、暗所）。
+# 滅菌水と未熟種子を空のシャーレに入れ、実体顕微鏡で見ながら胚を取り出し、平たいほうを上にして'''BDD1'''へ（25 ℃、暗所）。
-# 2週間が経ったら、クリーム色の硬いカルスだけを切り離してBDD2へ。10日たったら新しいBDD2に移植し、さらに10日間培養する（25 ℃、暗所）。
+# 2週間が経ったら、クリーム色の硬いカルスだけを切り離して'''BDD2'''へ。10日たったら新しい'''BDD2'''に移植し、さらに10日間培養する（25 ℃、暗所）。
 # 形質転換に用いるアグロを適当な抗生物質を加えたLBにて一晩培養する。
-# 適当な抗生物質を加えたBDAに200 μl伸ばし、28 ℃で2晩培養する。
+# 適当な抗生物質を加えた'''BDA'''に200 &mu;l伸ばし、28 ℃で2晩培養する。
-# 50 mlのファルコンチューブに10 mlの感染液を分注し、10 μlのアセトシリンゴンを加える。
+# 50 mlのファルコンチューブに10 mlの感染液を分注し、10 &mu;lのアセトシリンゴンを加える。
-# 空のシャーレに滅菌したろ紙を1枚押し込み、10. の感染液を750 μl入れてふたをしておく。
+# 空のシャーレに滅菌したろ紙を1枚押し込み、10. の感染液を750 &mu;l入れてふたをしておく。
 # 薬匙でアグロをかきとり、10 mlの感染液に懸濁する。
 # 28 ℃で45分間、220 rpm。
 # OD 600を量り、1になるように感染液で薄め、加えた感染液の1000分の1アセトシリンゴンを加える。
-# よいカルスを選んでBDD2に置く。
+# よいカルスを選んで'''BDD2'''に置く。
 # アグロ懸濁液13 mlを集めたカルスのプレートに入れて5分間置く。
 # 滅菌紙で余分な水分を除去し、11. のシャーレにカルスを入れて、25 ℃、暗黒下で2日間。
-# 適当な抗生物質を加えたBDSE1にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。このとき、アグロが増えすぎているカルスは捨てる。
+# 適当な抗生物質を加えた'''BDSE1'''にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。このとき、アグロが増えすぎているカルスは捨てる。
-# BDSE2にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。
+# '''BDSE2'''にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。
-# 感染から6週間後、抗生物質耐性のカルスをBDR26に移して2～3週間培養する（25 ℃、長日条件）。
+# 感染から6週間後、抗生物質耐性のカルスを'''BDR26'''に移して2～3週間培養する（25 ℃、長日条件）。
-# 発根したり、葉が出来たりしたカルスを3分の一MSに移して伸長させる。
+# 発根したり、葉ができたりしたカルスを3分の1 '''MS''' に移して伸長させる。

@@ Line 15: / Line 15: @@
 # ブラキポディウムの未熟種子をとる。※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。
-# ハイターを10ml、水を20ml位の割合で混ぜ、Tween20を1～2滴加えてよく混ぜる。
+# ハイターを10 ml、水を20 ml位の割合で混ぜ、Tween20を1～2滴加えてよく混ぜる。
 # 2. の液で未熟種子を3分程度滅菌する。
 # 3. を滅菌水で泡がなくなるまで洗う。
 # 先の細いピンセットを2本、実体顕微鏡、空のシャーレを1枚用意する。
-# 滅菌水と未熟種子を空のシャーレに入れ、実体顕微鏡で見ながら胚を取り出し、平たいほうを上にしてBDD1へ（25℃、暗所）。
+# 滅菌水と未熟種子を空のシャーレに入れ、実体顕微鏡で見ながら胚を取り出し、平たいほうを上にしてBDD1へ（25 ℃、暗所）。
-# 2週間が経ったら、クリーム色の硬いカルスだけを切り離してBDD2へ。10日たったら新しいBDD2に移植し、さらに10日間培養する（25℃、暗所）。
+# 2週間が経ったら、クリーム色の硬いカルスだけを切り離してBDD2へ。10日たったら新しいBDD2に移植し、さらに10日間培養する（25 ℃、暗所）。
 # 形質転換に用いるアグロを適当な抗生物質を加えたLBにて一晩培養する。
-# 適当な抗生物質を加えたBDAに200μl伸ばし、28℃で2晩培養する。
+# 適当な抗生物質を加えたBDAに200 μl伸ばし、28 ℃で2晩培養する。
-# 50mlのファルコンチューブに10mlの感染液を分注し、10μlのアセトシリンゴンを加える。
+# 50 mlのファルコンチューブに10 mlの感染液を分注し、10 μlのアセトシリンゴンを加える。
-# 空のシャーレに滅菌したろ紙を1枚押し込み、⑩の感染液を750μl入れてふたをしておく。
+# 空のシャーレに滅菌したろ紙を1枚押し込み、10. の感染液を750 μl入れてふたをしておく。
-# 薬匙でアグロをかきとり、10mlの感染液に懸濁する。
+# 薬匙でアグロをかきとり、10 mlの感染液に懸濁する。
-# 28℃で45分間、220rpm。
+# 28 ℃で45分間、220 rpm。
-# OD600を量り、1になるように感染液で薄め、加えた感染液の1000分の1アセトシリンゴンを加える。
+# OD 600を量り、1になるように感染液で薄め、加えた感染液の1000分の1アセトシリンゴンを加える。
 # よいカルスを選んでBDD2に置く。
-# アグロ懸濁液13mlを集めたカルスのプレートに入れて5分間置く。
+# アグロ懸濁液13 mlを集めたカルスのプレートに入れて5分間置く。
-# 滅菌紙で余分な水分を除去し、11. のシャーレにカルスを入れて、25℃、暗黒下で2日間。
+# 滅菌紙で余分な水分を除去し、11. のシャーレにカルスを入れて、25 ℃、暗黒下で2日間。
 # 適当な抗生物質を加えたBDSE1にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。このとき、アグロが増えすぎているカルスは捨てる。
 # BDSE2にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。
-# 感染から6週間後、抗生物質耐性のカルスをBDR26に移して2～3週間培養する（25℃、長日条件）。
+# 感染から6週間後、抗生物質耐性のカルスをBDR26に移して2～3週間培養する（25 ℃、長日条件）。
 # 発根したり、葉が出来たりしたカルスを3分の一MSに移して伸長させる。

← Older revision		Revision as of 06:28, 10 August 2012
Line 13:		Line 13:

	; ［実験方法］		; ［実験方法］
−

	# ブラキポディウムの未熟種子をとる。※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。		# ブラキポディウムの未熟種子をとる。※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。

@@ Line 17: / Line 17: @@
 # ブラキポディウムの未熟種子をとる。※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。
 # ハイターを10ml、水を20ml位の割合で混ぜ、Tween20を1～2滴加えてよく混ぜる。
 # 2. の液で未熟種子を3分程度滅菌する。
 # 3. を滅菌水で泡がなくなるまで洗う。
 # 先の細いピンセットを2本、実体顕微鏡、空のシャーレを1枚用意する。
 # 滅菌水と未熟種子を空のシャーレに入れ、実体顕微鏡で見ながら胚を取り出し、平たいほうを上にしてBDD1へ（25℃、暗所）。
 # 2週間が経ったら、クリーム色の硬いカルスだけを切り離してBDD2へ。10日たったら新しいBDD2に移植し、さらに10日間培養する（25℃、暗所）。
 # 形質転換に用いるアグロを適当な抗生物質を加えたLBにて一晩培養する。
 # 適当な抗生物質を加えたBDAに200μl伸ばし、28℃で2晩培養する。
 # 50mlのファルコンチューブに10mlの感染液を分注し、10μlのアセトシリンゴンを加える。
 # 空のシャーレに滅菌したろ紙を1枚押し込み、⑩の感染液を750μl入れてふたをしておく。
 # 薬匙でアグロをかきとり、10mlの感染液に懸濁する。
 # 28℃で45分間、220rpm。
 # OD600を量り、1になるように感染液で薄め、加えた感染液の1000分の1アセトシリンゴンを加える。
 # よいカルスを選んでBDD2に置く。
 # アグロ懸濁液13mlを集めたカルスのプレートに入れて5分間置く。
 # 滅菌紙で余分な水分を除去し、11. のシャーレにカルスを入れて、25℃、暗黒下で2日間。
 # 適当な抗生物質を加えたBDSE1にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。このとき、アグロが増えすぎているカルスは捨てる。
 # BDSE2にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。
 # 感染から6週間後、抗生物質耐性のカルスをBDR26に移して2～3週間培養する（25℃、長日条件）。
 # 発根したり、葉が出来たりしたカルスを3分の一MSに移して伸長させる。

@@ Line 15: / Line 15: @@
-# ブラキポディウムの未熟種子をとる。
+# ブラキポディウムの未熟種子をとる。※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。
-　　※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。
 # ハイターを10ml、水を20ml位の割合で混ぜ、Tween20を1～2滴加えてよく混ぜる。

← Older revision		Revision as of 06:26, 10 August 2012
Line 4:		Line 4:
	\|}		\|}

−	~~ここにつくってください~~	+	==ブラキポディウム形質転換法==
		+
		+	==培地の調整==
		+
		+	{{GenerateIndex\|PlantBiotech\|Species/Brachypodium_distachyon/Media\|4}}
		+
		+	==形質転換法==
		+
		+	; ［実験方法］
		+
		+
		+	# ブラキポディウムの未熟種子をとる。
		+	※さやの中で長さはいっぱいに育っているがまだ柔らかい状態が一番いい。
		+
		+	# ハイターを10ml、水を20ml位の割合で混ぜ、Tween20を1～2滴加えてよく混ぜる。
		+
		+	# 2. の液で未熟種子を3分程度滅菌する。
		+
		+	# 3. を滅菌水で泡がなくなるまで洗う。
		+
		+	# 先の細いピンセットを2本、実体顕微鏡、空のシャーレを1枚用意する。
		+
		+	# 滅菌水と未熟種子を空のシャーレに入れ、実体顕微鏡で見ながら胚を取り出し、平たいほうを上にしてBDD1へ（25℃、暗所）。
		+
		+	# 2週間が経ったら、クリーム色の硬いカルスだけを切り離してBDD2へ。10日たったら新しいBDD2に移植し、さらに10日間培養する（25℃、暗所）。
		+
		+	# 形質転換に用いるアグロを適当な抗生物質を加えたLBにて一晩培養する。
		+
		+	# 適当な抗生物質を加えたBDAに200μl伸ばし、28℃で2晩培養する。
		+
		+	# 50mlのファルコンチューブに10mlの感染液を分注し、10μlのアセトシリンゴンを加える。
		+
		+	# 空のシャーレに滅菌したろ紙を1枚押し込み、⑩の感染液を750μl入れてふたをしておく。
		+
		+	# 薬匙でアグロをかきとり、10mlの感染液に懸濁する。
		+
		+	# 28℃で45分間、220rpm。
		+
		+	# OD600を量り、1になるように感染液で薄め、加えた感染液の1000分の1アセトシリンゴンを加える。
		+
		+	# よいカルスを選んでBDD2に置く。
		+
		+	# アグロ懸濁液13mlを集めたカルスのプレートに入れて5分間置く。
		+
		+	# 滅菌紙で余分な水分を除去し、11. のシャーレにカルスを入れて、25℃、暗黒下で2日間。
		+
		+	# 適当な抗生物質を加えたBDSE1にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。このとき、アグロが増えすぎているカルスは捨てる。
		+
		+	# BDSE2にカルスを移して10日毎に新しい培地に移植しながら3週間培養する。
		+
		+	# 感染から6週間後、抗生物質耐性のカルスをBDR26に移して2～3週間培養する（25℃、長日条件）。
		+
		+	# 発根したり、葉が出来たりしたカルスを3分の一MSに移して伸長させる。

← Older revision		Revision as of 00:21, 8 August 2012
Line 1:		Line 1:
		+	{{PlantBiotech/Header}}
		+	{\| style="float:right"
		+	\|__TOC__
		+	\|}
		+
	ここにつくってください		ここにつくってください